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Oct 05, 2023

Insektizidresistenz von Anopheles sinensis nach Eliminierung der Malaria in der Provinz Henan, China

Parasiten und Vektoren

Parasites & Vectors Band 16, Artikelnummer: 180 (2023) Diesen Artikel zitieren

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Historisch gesehen kam es in der chinesischen Provinz Henan zu einer epidemischen Ausbreitung der durch Plasmodium vivax verursachten Malaria, wobei Anopheles sinensis der Hauptüberträger war. Die wirksamsten Maßnahmen zur Verhinderung der Malariaübertragung basieren auf der Vektorbekämpfung durch den Einsatz von Insektiziden. Allerdings üben Insektizide einen starken selektiven Druck auf die Mückenpopulationen hinsichtlich der Insektizidresistenz aus. Ziel dieser Studie war es, das Anfälligkeitsprofil und die populationsgenetischen Eigenschaften von An zu untersuchen. sinensis, um grundlegende Daten und wissenschaftliche Leitlinien für die Untersuchung von Resistenzmechanismen und die Kontrolle von An bereitzustellen. sinensis in der Provinz Henan.

Ausgewachsene Anopheles-Mücken wurden von Juli bis September 2021 an Standorten in der Nähe der Schafställe, Schweineställe und/oder Kuhställe lokaler Bauern in den Kreisen/Bezirken Pingqiao, Xiangfu, Xiangcheng und Tanghe der Provinz Henan gesammelt, um die Empfindlichkeit gegenüber Insektiziden zu testen. Die molekulare Identifizierung gesammelter Mücken als zur Gattung Anopheles gehörend erfolgte durch PCR, und die Häufigkeit von Mutationen im Knockdown-Resistenzgen (kdr) und im Acetylcholinesterase-1-Gen (ace-1) wurde mittels Genamplifikation nachgewiesen. Das Gen der mitochondrialen DNA-Cytochromoxidase-Untereinheit I (COI) wurde in Deltamethrin-resistenten und Deltamethrin-empfindlichen Mücken amplifiziert, um die genetische evolutionäre Beziehung zu analysieren.

Durch molekulare Identifizierung wurden insgesamt 1409 Anopheles-Mücken identifiziert, davon waren 1334 (94,68 %) An. sinensis, 28 (1,99 %) waren An. yatsushiroensis, 43 (3,05 %) waren An. Anthropophagus und vier (0,28 %) waren An. Belenrae. Die 24-Stunden-Sterblichkeitsraten von An. sinensis in den Kreisen/Bezirken Pingqiao, Tanghe, Xiangcheng und Xiangfu, die Deltamethrin ausgesetzt waren, betrugen 85,85 %, 25,38 %, 29,73 % bzw. 7,66 %; gegenüber Beta-Cyfluthrin: 36,24 %, 70,91 %, 34,33 % bzw. 3,28 %; zu Propoxur: 68,39 %, 80,60 %, 37,62 % bzw. 9,29 %; und gegenüber Malathion 97,43 %, 97,67 %, 99,21 % bzw. 64,23 %. Im ace-1-Gen wurde eine Mutation, G119S, nachgewiesen. Die Häufigkeiten der Hauptgenotypen betrugen 84,21 % der in Xiangfu (G/S) gesammelten Proben, 90,63 % der in Xiangcheng (G/G) gesammelten Proben und 2,44 % der in Tanghe (S/S) gesammelten Proben. Sowohl bei propoxur- als auch bei malathionresistenten Mücken wurden deutlich höhere G119S-Allelfrequenzen beobachtet als bei ihren empfindlichen Gegenstücken in der Tanghe-Population (P < 0,05). Im kdr-Gen wurden drei Mutationen nachgewiesen, L1014F (41,38 %), L1014C (9,15 %) und L1014W (0,12 %). Die Genotypen mit der höchsten Häufigkeit in den Populationen von An. sinensis in Xiangfu und Tanghe waren das mutierte TTT (F/F) und das Wildtyp-TTG (L/L) mit 67,86 % (57/84) bzw. 74,29 % (52/70). In Pingqiao und Xiangfu wurden bei Mücken, die gegenüber Beta-Cyfluthrin resistent waren, höhere Häufigkeiten des L1014F-Allels und niedrigere Häufigkeiten des L1014C-Allels beobachtet als bei denen, die gegenüber diesem Insektizid empfindlich waren (P < 0,05). Die Ergebnisse von Tajimas D und von Fu und Lis D und F waren nicht signifikant negativ (P > 0,10), und jeder Haplotyp war verflochten und bildete keine zwei unterschiedlichen Zweige.

An vier Standorten wurde eine hohe Resistenz gegen Pyrethroide und Propoxur beobachtet, die Resistenz gegen Malathion variierte jedoch je nach Standort. Anopheles belenrae und die L1014W (TGG)-Mutation in An. sinensis wurden erstmals in der Provinz Henan entdeckt. Die Deltamethrin-resistenten und Deltamethrin-sensitiven Mückenpopulationen zeigten keine genetische Differenzierung. Die Entstehung von Resistenzen könnte das Ergebnis der Kombination mehrerer Faktoren sein.

Malaria, verursacht durch eine Infektion mit Plasmodium spp., ist weltweit eine der bedeutendsten lebensbedrohlichen Infektionskrankheiten beim Menschen. Laut dem WHO-Malariabericht 2022 erreichte die Gesamtzahl der Todesfälle aufgrund von Malaria im Jahr 2021 weltweit 619.000, wobei etwa 247 Millionen Malariafälle gemeldet wurden [1]. Anopheles sinensis ist die vorherrschende Anopheles-Art in der chinesischen Provinz Henan und der Hauptüberträger des Malariaparasiten Plasmodium vivax [2]. Im Jahr 2006 kam es im Landkreis Yongcheng in der Provinz Henan zu einem durch P. vivax verursachten Malaria-Ausbruch [3]. Es ist bekannt, dass es in den ursprünglichen Malaria-Endemiegebieten immer noch Malaria-Überträger gibt, und wenn es auch importierte Malaria-Fälle gibt, ist das Risiko eines Malaria-Ausbruchs extrem hoch. Es ist zu einer wichtigen Maßnahme zur Kontrolle der Bevölkerungsdichte von An geworden. sinensis und andere Malaria-Überträger und verhindern eine Sekundärübertragung durch importierte Fälle [4, 5]. Die indigene Übertragung von Malaria wurde wirksam kontrolliert, und China erhielt 2021 offiziell die WHO-Zertifizierung für die Eliminierung von Malaria. Mit der Entwicklung des Welthandels und der transnationalen Wirtschaft sind aus Übersee importierte Infektionen zur Hauptquelle von Malariafällen in der Provinz Henan geworden. Importierte Malaria hat neue Herausforderungen für die vollständige Eliminierung von Malaria mit sich gebracht [6,7,8].

Insektizide waren die wichtigste Maßnahme zur Bekämpfung der Mückenzahl. Aufgrund ihres breiten Wirkungsspektrums, ihrer Effizienz und ihrer dauerhaften Eigenschaften werden Insektizide weltweit häufig eingesetzt [9]. Es wurden fünf Hauptkategorien von Insektiziden eingesetzt: Pyrethroide, Organochlor, Carbamate, Neonicotinoide und Organophosphate [10]. Pyrethroide erweisen sich aufgrund ihrer kurzen Restwirkung, ihrer hohen Wirksamkeit gegen Mückenvektoren und ihrer geringen Toxizität für den Menschen als die vorherrschenden Insektizide zur Vektorbekämpfung [11]. Die Hauptziele von Insektiziden auf Mückenvektoren sind die Natriumionenkanäle (SC), Acetylcholinesterase (AchE) und der Gamma-Aminobuttersäure (GABA)-Rezeptor-Chlorid-Kanal-Komplex [12]. Unter diesen verursachen Mutationen in den Genen, die mit dem Natriumkanal im Axon assoziiert sind, eine Knockdown-Resistenz (kdr). Die Mutation am Codon 1014 des Knockdown-Gens (kdr) in der IIS6-Region des Natriumkanals wird auch als kdr-Mutation bezeichnet [13, 14]. Es wurden vier Arten von kdr-Mutationen identifiziert: (i) die L1014C-Mutation (TTG → TGT) führt zu einem Wechsel von Leucin- zu Cystein-Substitution; (ii) die L1014W-Mutation (TTG → TGG) führt zu einer Leucin-zu-Tryptophan-Substitution; und (iii) zwei L1014F-Mutationen (TTG → TTT und TTG → TTC) führen zu einer Leucin-zu-Phenylalanin-Substitution. Eine Mutation am Codon 119 des Acetylcholinesterase-1-Gens (ace-1) führt zu einer einzelnen Aminosäuresubstitution von Glycin durch Serin in der Bindungstasche der Acetylcholinesterase, was zu einer Resistenz gegen Organophosphate und Carbamate führt [15].

Das Verständnis der genetischen Differenzierung der Population hilft, Rückschlüsse auf die aktuelle Situation und den möglichen Verbreitungsweg der Insektizidresistenz zu ziehen und so den Einsatz von Insektiziden zu steuern [16]. Die Populationsgenetik analysiert auf der Grundlage der Merkmale der genetischen Struktur der Population den evolutionären Prozess der Population, untersucht die genetische Struktur und Veränderungsdynamik von Organismen und erklärt die Unterschiede zwischen Populationen. Als wichtiger Bestandteil des mitochondrialen Gens weist das Gen der Cytochromoxidase-Untereinheit I (COI) eine große Variation auf und wird häufig für die Analyse der phylogenetischen und populationsgenetischen Diversität verwendet. Die mitochondriale DNA (mtDNA)-COI-Gensequenz wurde aufgrund ihrer einfachen Struktur, schnellen Evolutionsrate und extrem geringen Rekombinationswahrscheinlichkeit in populationsgenetischen Analysen verwendet [17,18,19].

Obwohl die Insektizidresistenz von An. sinensis in der Provinz Henan untersucht wurde, liegen nur wenige Daten zur Resistenzüberwachung aus den letzten Jahren vor [20,21,22]. Daher haben wir anhand früherer Überwachungsdaten die Insektizidresistenz von An untersucht. sinensis in vier Regionen der Provinz Henan, mit dem Ziel, den Insektizidresistenzstatus von An zu bestimmen. sinensis in der Provinz Henan. Um die aktuelle Situation der Zielresistenz und der populationsgenetischen Eigenschaften von An besser zu verstehen. sinensis in der Provinz Henan haben wir Proben von An ausgewählt. sinensis, um die Mutation und Häufigkeit der kdr- und ace-1-Gene zu erkennen, und führte eine populationsgenetische Analyse empfindlicher und resistenter Mücken auf der Grundlage des mtDNA-COI-Gens durch, wodurch eine wissenschaftliche Grundlage für die Steuerung der für An erforderlichen Kontrollmaßnahmen geschaffen wurde. sinensis und Basisdaten für die weitere Untersuchung der populationsgenetischen Eigenschaften von An. sinensis in China.

Diese Studie zur Insektizidresistenz von Mücken wurde von Juli bis September 2021 in vier Bezirken/Bezirken der Provinz Henan durchgeführt, nämlich Pingqiao, Xiangfu, Xiangcheng und Tanghe. Erwachsene Anopheles-Mücken wurden mit einer Maxttrac-Mückenfalle (Shanghai Daolan Industrial Co., Ltd, China) in der Nähe der Schafställe, Schweineställe und/oder Kuhställe lokaler Bauern gesammelt. Gesammelte Mücken wurden zum Insektarium des Henan Provincial Center for Disease Control and Prevention (CDC) transportiert, wo sie unter Standardbedingungen (27 ± 1 °C und 80 % relative Luftfeuchtigkeit [RH]) akklimatisiert und mit 8 % Glukoselösung versorgt wurden bis zum nächsten Tag, an dem sie in den Experimenten verwendet wurden. Alle gesammelten Mücken wurden morphologisch ihren jeweiligen Komplexen und Gruppen zugeordnet (23).

Gemäß den Standardverfahren der WHO für Insektizid-Empfindlichkeitsröhrchentests [24] wurden erwachsene weibliche Mücken zur Durchführung von Biotests verwendet, um die Anfälligkeit für vier Insektizide (geliefert von China CDC) zu bestimmen: Malathion (5 %), Deltamethrin (0,05 %), Beta -Cyfluthrin (0,15 %) und Propoxur (0,1 %). Als Kontrollen wurden mit Olivenöl, Silikonöl, Silikonöl bzw. Olivenöl behandelte Papiere verwendet. Für jedes Insektizid wurden 120 weibliche Mücken getestet, mit 20 Mücken pro Röhrchen und zwei Kontrollröhrchen ohne Insektizid. Die Anzahl der Knockdown-Mücken wurde während der Expositionsdauer nach 10, 15, 20, 30, 40, 50 und 60 Minuten aufgezeichnet. Nach 60-minütiger Exposition wurden alle Mücken in Halteröhrchen überführt, mit 8 % Zuckerwasser versehen und Bedingungen von 26 °C und 80 % relativer Luftfeuchtigkeit ausgesetzt. Am Ende dieser 24-stündigen Erholungsphase wurde die Anzahl der toten Mücken gezählt und aufgezeichnet. Nach den Bioassays wurden alle Mücken einzeln in 1,5-ml-Eppendorf-Röhrchen für weitere molekulare Analysen konserviert.

Die im Feld gesammelten Mücken wurden morphologisch als An identifiziert. sinensis wurden auf Insektizidresistenz getestet und anschließend ihre Identität molekular bestätigt. Ein Bein jeder Mücke wurde für die DNA-Extraktion mit dem Animal Tissue Genomic DNA Extraction Kit (Xi'an Tianlong Science & Technology Co., Ltd, Xi'an City, China) verwendet. Genauer gesagt wurde ein Bein in ein 100-μl-Aliquot der Gewebelyselösung gelegt und mit einem elektrischen Gewebezerkleinerer vollständig gemahlen. Dann wurden 200 μl Gewebelyselösung und 40 μl Protein-K-Lösung hinzugefügt und durch Vortexen gemischt. Zur automatischen DNA-Extraktion wurde ein automatischer Nukleinsäureextraktor (Qiagen, Hilden, Deutschland) verwendet. Molekulare Identifizierung von An. sinensis wurde unter Verwendung artspezifischer Primer und Amplifikation des internen transkribierten Spacers 2 (ITS2) durchgeführt (25). Die als An identifizierten Proben. sinensis wurden erneut für die anschließende Genamplifikation und Datenanalyse verwendet.

Um Punktmutationen des ace-1-Gens am Codon 119 zu bestimmen, wurde ein 193-bp-Fragment in An amplifiziert. sinensis unter Verwendung der Primer ace-1-F (467F; 5'-GTCGGACCATGTGGAACC-3') und ace-1-R (660R; 5'-ACCACGATCACGTTCTCCTC-3') [26]. Amplifikationsreaktionen wurden in einem 25-µl-Reaktionsvolumen durchgeführt, das 2 µl der DNA-Probe, 12 µl eines 2 × Go Taq Green Master Mix (Promega Inc., Madison, WI, USA), 2 µl Zielprimer und 9 µl enthielt von ddH2O. Der PCR-Zyklus bestand aus einem Zyklus bei 95 °C für 3 Minuten, gefolgt von 35 Zyklen mit 94 °C für 30 Sekunden, 55 °C für 30 Sekunden und 72 °C für 45 Sekunden, mit einer abschließenden Verlängerung bei 72 °C für 6 Mindest. Die Sequenzierung wurde von Shanghai DNA Bio Technologies Co., Ltd. (Shanghai, China) durchgeführt. Die Genotypisierung von Punktmutationen des kdr-Gens am Codon 1014 wurde wie zuvor beschrieben durchgeführt [11].

Um die genetische evolutionäre Beziehung zwischen resistenten und empfindlichen Mücken von An zu klären. sinensis wurde das mtDNA-COI-Gen in Deltamethrin-resistenten und Deltamethrin-sensitiven An amplifiziert. sinensis unter Verwendung des Vorwärtsprimers GGTCAACAAATCATAAAGATATTGG und des Rückwärtsprimers TAAACTTCAGGGTGACCAAAAAATCA nach den zuvor von Liang et al. beschriebenen Methoden. [27]. Alle PCR-Produkte wurden durch 2 % Agarosegelelektrophorese analysiert und die gereinigten Produkte wurden mit einem automatischen Sequenzierer ABI 3730XL (Applied Biosystems®, Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA) sequenziert.

Die Sterblichkeitsraten der Test- und Kontrollproben wurden nach dem Bioassay für jede Insektizidgruppe berechnet. Wenn die Kontrollmortalität > 20 % betrug, wurden die Tests verworfen. Wenn die Kontrollmortalität 5 % und 20 % betrug, wurde die beobachtete Mortalität mithilfe der Abbott-Formel korrigiert [28]. Der Mückenresistenzstatus wurde gemäß den WHO-Richtlinien wie folgt interpretiert: (i) bestätigte Resistenz (CR), Sterblichkeitsrate < 90 %; (ii) mögliche Resistenz (PR), Sterblichkeitsrate zwischen 90 % und 97 %; und (iii) Anfälligkeit (S), Sterblichkeitsrate ≥ 98 % [24]. Statistische Analysen wurden mit der Software SPSS Version 21.0 (IBM Corp., Armonk, NY, USA) durchgeführt. Die Sterblichkeitsraten von An. sinensis an den Untersuchungsstandorten, ace-1- und kdr-Mutationsraten und Genmutationsraten der verschiedenen Populationen wurden mithilfe des Chi-Quadrat-Tests (χ2) berechnet. Nukleotidpolymorphismus, natürliche Selektion und Populationsdifferenzierung wurden nach He et al. beschrieben. [29]. Darüber hinaus haben wir auf der Grundlage der Medianverbindungsmethode ein Haplotyp-Netzwerkdiagramm zwischen den verschiedenen geografischen Populationen erstellt, mit dem Ziel, die genetische Beziehung zwischen verschiedenen geografischen Populationen mithilfe der PopArt-Software zu analysieren. Ein AP-Wert von < 0,05 wurde als Hinweis auf Signifikanz angesehen.

Die molekulare Identifizierung aller zur Bestimmung der Insektizidresistenz verwendeten Proben erfolgte anhand der Länge der Elektrophoresefragmente des PCR-Produkts. Durch artspezifische PCR wurden insgesamt 1409 Anopheles-Mücken identifiziert, davon waren 1334 (94,68 %) An. sinensis, 28 (1,99 %) waren An. yatsushiroensis, 43 (3,05 %) waren An. Anthropophagus und vier (0,28 %) waren An. belenrae (Tabelle 1). Analyse der Insektizidresistenz des 1334 An. Sinensis-Mücken zeigten, dass die 24-Stunden-Sterblichkeitsraten bei Mücken, die Deltamethrin, Beta-Cyfluthrin und Propoxur ausgesetzt waren, zwischen 3,28 % und etwa 85,85 % lagen und damit den CR-Wert erreichten. Die 24-Stunden-Sterblichkeitsrate von An. Sinensis zu Malathion betrug in Pingqiao und Tanghe 97,43 % bzw. 97,67 % und erreichte damit das PR-Niveau. Die 24-Stunden-Mortalitätsraten für Malathion betrugen in Xiangfu und Xiangcheng 64,23 % (CR) bzw. 99,21 % (S). Der Unterschied zwischen der Knockdown-Rate und der 24-Stunden-Mortalität der verschiedenen Insektizide an den vier Probenahmestellen war statistisch signifikant (χ2 = 32,635 bis ca. 143,433; P < 0,05). Für Beta-Cyfluthrin, Deltamethrin, Propoxur und Malathion lag die mittlere Knockdown-Zeit für 50 % der getesteten Mücken (KT50) in Pingqiao, Tanghe, Xiangcheng und Xiangfu zwischen 29,81 Minuten und etwa 315,73 Minuten. Für Beta-Cyfluthrin und Deltamethrin konnte der KT50 aufgrund der niedrigen Knockdown-Rate in Xiangfu nicht berechnet werden (Tabelle 2).

Mücken molekular identifiziert als An. sinensis wurden zur Amplifikation von ace-1 verwendet. In dieser Studie wurden insgesamt 315 Mücken verwendet, darunter Propoxur- und Malathion-resistente und -empfindliche Mücken. Nach dem Zusammenfügen der Sequenzierungsergebnisse wurde eine 193 bp lange Gensequenz erhalten. Drei Genotypen des ace-1-Gens in verschiedenen Populationen von An. sinensis wurden durch Sequenz-Alignment nachgewiesen: GGC (G/G), AGC (S/S) und GGC/AGC (G/S). Unter diesen ist G/G der homozygote Wildtyp, S/S ist ein homozygoter Mutant und G/S ist ein heterozygoter Mutant. Drei Genotypen wurden in drei Populationen nachgewiesen: Pingqiao, Tanghe und Xiangfu. In Xiangcheng wurden nur zwei Genotypen nachgewiesen, an diesem Standort wurde keine Mücke mit dem Genotyp S/S gefunden. Der Hauptgenotyp der Pingqiao- und Xiangfu-Populationen war G/S mit einer Häufigkeit von 68,67 % (57/83) bzw. 84,21 % (80/95). Die Tanghe- und Xiangcheng-Populationen basierten auf dem Genotyp, wobei G/G in beiden Populationen mit 73,17 % (30/41) bzw. 90,63 % (87/96) die höchste Häufigkeit aufwies und der Genotyp S/S nur in den Tanghe vorkam Bevölkerung, mit einer Häufigkeit von nur 2,44 % (1/41). In den vier Stichprobenpopulationen von An wurden zwei Allele gefunden. sinensis in der Provinz Henan: Wildtyp G119G und Mutantentyp G119S, mit einer Gesamtmutationsrate von 33,65 %. Sowohl bei Propoxur- als auch bei Malathion-resistenten Mücken wurden signifikant höhere G119S-Allelfrequenzen beobachtet als bei Propoxur- und Malathion-empfindlichen Mücken in der Tanghe-Population (P < 0,05), diese Verteilung wurde jedoch in den anderen drei Populationen nicht beobachtet. Tabelle 3 enthält detaillierte Daten zur Beziehung zwischen dem mutierten Gen ace-1 und der Insektizidresistenz in An. sinensis.

Ein 325-bp-Fragment, das Position 1014 enthielt, wurde erfolgreich aus 339 Deltamethrin- und Beta-Cyfluthrin-resistenten und Deltamethrin- und Beta-Cyfluthrin-sensitiven An sequenziert. sinensis. Die Mutationshäufigkeit am Codon 1014 des kdr-Gens an den vier Sammelstellen betrug 68,83 % (Pingqiao), 18,04 % (Tanghe), 17,70 % (Xiangcheng) und 98,05 % (Xiangfu). Zehn Genotypen des kdr-Gens in den verschiedenen Populationen von An. sinensis wurden durch Sequenz-Alignment nachgewiesen: TTG (L/L), TTT (F/F), TGT (C/C), TTG/TGT (L/C), TGG/TTT (W/F), TTT/TGT ( F/C), TGT/TTC (C/F), TTG/TTT (L/F), TTG/TTC (L/F) und TTT/TTC (F/F). Unter diesen ist TTG der Wildtyp; Bei den anderen neun handelt es sich um Mutationen, wobei TTT und TGT homozygote Mutationen sind und die übrigen sieben Genotypen heterozygote Mutationen sind. Die höchste Anzahl an Genotypen wurde in der Pingqiao-Probe nachgewiesen, darunter neun Genotypen. Die Genotypen mit der höchsten Häufigkeit in den Pingqiao- und Xiangfu-Populationen von An. sinensis waren mit 32,18 % (28/87) bzw. 67,86 % (57/84) der mutierte TTT-Genotyp (F/F). Die höchste Häufigkeit des Wildtyp-TTG-Genotyps (L/L) wurde in den Tanghe- und Xiangcheng-Populationen mit 74,29 % (52/70) bzw. 67,35 % (66/98) gefunden (Zusatzdatei 1: Tabelle S1). . Wie in Tabelle 4 gezeigt, betrug die Gesamtmutationsrate des kdr-Gens 50,65 %, wobei die L1014F-Mutation die höchste Häufigkeit aufwies (41,38 %); Die Häufigkeit der L1014C-Mutation betrug 9,15 % und die L1014W-Mutation hatte die niedrigste Häufigkeit (0,12 %). Bei Beta-Cyfluthrin-resistenten Mücken wurde eine signifikant höhere Häufigkeit des L1014F-Allels beobachtet als bei ihren empfindlichen Gegenstücken in den Populationen Pingqiao, Tanghe und Xiangfu, bei Beta-Cyfluthrin-resistenten Mücken wurde jedoch eine deutlich geringere Häufigkeit des L1014C-Allels beobachtet in ihren empfindlichen Gegenstücken in den Pingqiao- und Xiangfu-Populationen (P < 0,05).

Die genetische Diversitätsanalyse von 58 COI-Gensequenzen von Mücken, die im Studienzeitraum 2020–2021 gesammelt wurden, ergab, dass es 59 Mutationsstellen gab, darunter 27 Singleton-Variablenstellen und 32 Sparsamkeits-Informationsstellen. Wie in Tabelle 5 gezeigt, betrug die gesamte haploide Diversität (Hd ± Standardabweichung) gemäß der Analyse des DNA-Diversitätsindex im Jahr 2021 0,953 ± 0,022, und der haploide Diversitätsindex (Hd) ± SD betrug im Jahr 2020 1,00 Die Diversität betrug 0,00910 (im Jahr 2021) und 0,00864 (im Jahr 2020). Die Ergebnisse von Tajimas D und von Fu und Lis D und F waren im Zeitraum 2020–2021 nicht signifikant negativ (P > 0,10). Der genetische Abstand zwischen resistenten und empfindlichen Mückenpopulationen betrug 0,009, ihre intraspezifischen genetischen Abstände betrugen jedoch 0,009 und 0,01, was auf eine enge genetische Verwandtschaft zwischen den beiden Populationen hinweist. Der genetische Differenzierungsindex (Fst) zwischen den beiden Populationen war nicht signifikant negativ (P > 0,10), was darauf hinweist, dass zwischen den beiden Populationen keine signifikante genetische Differenzierung vorliegt (Zusatzdatei 2: Tabelle S2).

In 52 mtDNA-COI-Gensequenzen von Mücken, die im Jahr 2021 gesammelt wurden, wurden insgesamt 36 Haplotypen nachgewiesen, darunter 32 einzigartige Haplotypen und vier gemeinsame Haplotypen. Von den 32 einzigartigen Haplotypen stammten 18 von resistenten Mücken und 14 von empfindlichen Mücken. Das Haplotyp-Netzwerkdiagramm zeigt, dass der gemeinsame Haplotyp Hap_8 die größte Anzahl (6 resistente Mücken, 5 empfindliche Mücken) an Mücken ausmachte und die Haplotypen Hap_6, Hap_12 und Hap_21 von zwei Populationen gemeinsam genutzt wurden, es gab jedoch nur zwei. Wie in Abb. 1 gezeigt, war jeder Haplotyp verflochten und bildete keine zwei unterschiedlichen Zweige.

Haplotypennetzwerk deltamethrinresistenter und deltamethrinempfindlicher Mücken. Kreise stellen einen Haplotyp dar, schwarze Punkte stellen den angenommenen Zwischenhaplotyp dar und die horizontale Linie stellt einen Mutationsschritt dar. Die Größe des Kreises ist proportional zur Häufigkeit des Haplotyps

Molekulare Überwachung und Bioassays des Insektizidresistenzstatus bei lokalen Malariavektoren sind wichtige Instrumente zur Verwaltung und Kontrolle von Resistenzvektoren [30]. Eine frühere Studie zeigte die anfängliche Entwicklung einer Resistenz bei An. sinensis gegen Deltamethrin und Cyfluthrin in der Stadt Nanyang [31]. Die Ergebnisse der Studie von Hu et al. deuten darauf hin, dass die Resistenz von An. Sinensis gegen Deltamethrin und Beta-Cyfluthrin kam es in der Stadt Puyang in den Jahren 2018 und 2020 [20]. Die Ergebnisse der Resistenzüberwachung in unserer Studie zeigten, dass die Resistenz von An. Die Resistenz gegen Pyrethroid-Insektizide in der Provinz Henan nimmt zu, wobei der Grad der Resistenz gegen das Propoxur-Insektizid in den vier untersuchten Regionen bereits erreicht ist. Die Resistenz gegen Malathion unterschied sich jedoch hinsichtlich der Resistenzempfindlichkeit. Die Ergebnisse für Malathion ähneln denen früherer Studien [20, 21], was möglicherweise auf den geringeren Einsatz von Malathion in der Provinz Henan in den letzten Jahrzehnten zurückzuführen ist [32]. Angesichts der heutigen Empfindlichkeit von Mücken gegenüber Malathion können alternative Insektizide eingesetzt werden, um die Entwicklung einer Mückenresistenz gegen Malathion zu verlängern.

In unserer Studie wurde nur ein Mutationstyp, G119S, gefunden. Dieses Ergebnis steht im Einklang mit Beobachtungen in veröffentlichten Studien, die darauf hindeuten, dass die G119S-Mutation in An weit verbreitet ist. sinensis [33]. Im Vergleich zu anderen Mücken stimmt dieses Ergebnis auch mit den ace-Genmutationen bei Anopheles gambiae und Culex pipiens überein [34]. Qin et al. berichteten über eine mäßige bis hohe (45–75 %) Ace-1-Mutationshäufigkeit in An. sinensis-Populationen [33]. Chang et al. zeigten, dass die Häufigkeit von G119S-Mutationen in der Bevölkerung von Anhui (China) und Yunnan (China) 58,9 % bzw. 38,5 % betrug [35]. Diese Ergebnisse legen nahe, dass die G119S-Mutationsrate von An. sinensis hoch ist und dass diese Mutation weit verbreitet ist. Eine frühere Studie ergab, dass die G119S-Allelhäufigkeit einer homozygoten Mutation bei Mücken aus den beiden An 100 % betrug. sinensis-Populationen, was darauf hindeutet, dass es nicht an der Malathionresistenz beteiligt ist [36]. Die Genmutationsrate der Xiangfu-Bevölkerung in der Provinz Henan betrug bis zu 54,74 %, was darauf hindeutet, dass die hohe Häufigkeit der G119S-Mutation das Ergebnis des langfristigen Einsatzes von Organophosphor-Insektiziden zur Schädlingsbekämpfung in der Landwirtschaft sein könnte [27]. Die hohe Häufigkeit der G119S-Mutation deutete darauf hin, dass diese An. Sinensis-Populationen haben ein hohes Risiko, Resistenzen gegen Organophosphor- und Carbamat-Insektizide zu entwickeln. Andere Forscher fanden heraus, dass die Mutationen G285A und F350Y auf dem ace-Gen mit der Resistenz gegen organischen Phosphor zusammenhängen und dass die Mutationen F105S, G285A und F305Y mit der Resistenz gegen Carbamat zusammenhängen [37]. Sowohl bei Propoxur- als auch bei Malathion-resistenten Mücken wurden höhere G119S-Allelfrequenzen beobachtet als bei Propoxur- und Malathion-empfindlichen Mücken in der Tanghe-Population, eine solche Entwicklung wurde jedoch an den anderen drei Standorten nicht beobachtet, was darauf hindeutet, dass es zu einer Resistenzbildung kommen könnte das Ergebnis der gemeinsamen Wirkung mehrerer Faktoren.

Kdr wurde erstmals in der Stubenfliege Musca Domestica L. identifiziert [38]. Über die L1014F-Substitution wurde bei pyrethroidresistenten Schädlingsarten berichtet, darunter An. Gambiae und Cx. P. pallens [39, 40]. Die L1014C-Mutation, bei der TTG (Leu) durch TGT (Cys) ersetzt wurde, ist eine neu gemeldete Mutation [41]. Die L1014F- und L1014C-Mutationen wurden in der Republik Korea entdeckt, wo die TTC-L1014F-Mutation zum ersten Mal beobachtet wurde [42]. Frühere Studien ergaben, dass die Häufigkeit des L1014F-Allels signifikant mit Deltamethrin-resistenten und DDT-resistenten Phänotypen assoziiert war, dass dies jedoch beim L1014C-Allel nicht der Fall war. In Kaifeng (Henan, China) war der Unterschied in der kdr-Mutationshäufigkeit zwischen überlebenden und toten Mücken statistisch signifikant (36, 43). Sun et al. berichteten, dass der Unterschied in der kdr-Mutationshäufigkeit zwischen überlebenden und toten Mücken in Yingjiang (Yunnan, China) und Suining (Jiangsu, China) statistisch nicht signifikant war (43).

In der vorliegenden Studie wurden drei Arten von kdr-mutierten Allelen gefunden, darunter L1014F, L1014C und L1014W. Im Gegensatz zur Situation bei An. sinensis in Sichuan, China, wo die Häufigkeit von L1014F höher war als die von L1014L. Es wurde festgestellt, dass L1014L das vorherrschende Resistenzallel in Henan ist, L1014C wies jedoch geringere Häufigkeiten auf als L1014F und L1014L, was den Ergebnissen der vorliegenden Studie ähnelt (33). In einer früheren Studie wurden in der Provinz Henan L1014F- und L1014C-Mutationen gefunden, und die L1014W-Mutation wurde erstmals in der vorliegenden Studie gefunden [11]. In der vorliegenden Studie war der Anteil der L1014W-Mutation sehr gering (0,12 %) und nur in der Pingqiao-Population verbreitet. Tan et al. berichteten, dass das Vorhandensein der L1014W-Mutation in 52 An. sinensis in Guangxi, basierend auf ihrer kdr-Genmutationsstudie, die einen kleinen Anteil (1 %) ausmacht [44]. Dieses Ergebnis ähnelt dem der aktuellen Studie. Bei Beta-Cyfluthrin-resistenten Mücken wurden höhere L1014F- und niedrigere L1014C-Allelfrequenzen beobachtet als bei Beta-Cyfluthrin-empfindlichen Mücken, was darauf hindeutet, dass der Zusammenhang zwischen höheren L1014F- und niedrigeren L1014C-Allelfrequenzen und Insektizidresistenz einer weiteren eingehenden Analyse bedarf.

Die Entwicklung der Insektenresistenz basiert auf der Genetik insektizidresistenter Populationen. Der Hd betrug > 0,95 und die Nukleotiddiversität betrug > 0,008 im Zeitraum 2020–2021, was darauf hinweist, dass die gesamte genetische Diversität von An. sinensis in der Provinz Henan ist hoch. Die Werte von Tajimas D und von Fu und Lis D und F legen nahe, dass die Populationen der neutralen Selektionshypothese entsprechen und während des Evolutionsprozesses keinem offensichtlichen Selektionsdruck unterliegen. Yang et al. untersuchten die genetische Variation der Population und die Merkmale der Populationsstruktur von fünf Artengruppen von An. sinensis an neun Probenahmestellen in der Provinz Yunnan [45]. Diese Autoren berichteten über einen Genaustausch zwischen den vier Artengruppen von An. sinensis in der Provinz Yunnan, mit Ausnahme der YU-Populationsgruppe, und dass eine genetische Differenzierung nicht erkennbar war [45]. Die Werte des Fst und des Haplotyp-Netzwerkdiagramms zeigten, dass es keine genetische Unterscheidung zwischen deltamethrinresistenten und deltamethrinempfindlichen Mückenpopulationen gab, möglicherweise weil es sich bei den Mücken in dieser Studie ausschließlich um erwachsene Mücken handelte, die im Feld gesammelt wurden und dort lebten ökologische Umwelt und sah sich dem gleichen Druck bei der Auswahl von Insektiziden ausgesetzt. Externe Umweltfaktoren könnten den Grad der genetischen Differenzierung neutralisieren, sodass keine genetische Differenzierung zwischen den beiden Populationen beobachtet wurde. Die Ergebnisse dieser Studie zeigen, dass die Entstehung einer Mückenresistenz das Ergebnis mehrerer Mechanismen sein könnte.

Die Vorteile erwachsener weiblicher Mücken, die für die Untersuchung der Insektizidresistenz direkt im Feld gefangen werden, bestehen darin, dass weniger Einrichtungen erforderlich sind und die Altersverteilung der Vektoren repräsentativ für die wilde Vektorpopulation zu einem bestimmten Zeitpunkt und an einem bestimmten Ort ist. Zu den Einschränkungen dieser Studie gehört, dass die Blutsauggeschichte, das Alter und der Überlebensstatus erwachsener weiblicher Mücken nicht genau beurteilt werden konnten, was sich auf die Testergebnisse auswirken könnte. Aus enzymologischer und proteomischer Sicht wurden keine weiteren Untersuchungen zu Mutationen an anderen Stellen als den Genen kdr und ace-1 und keine umfassenden Untersuchungen zu Resistenzmechanismen durchgeführt.

In der vorliegenden Studie wurden vier Anopheles-Arten identifiziert: An. sinensis, An. yatsushiroensis, An. Anthropophagus und An. Belenrae. Anopheles belenrae wurde zum ersten Mal in der Provinz Henan entdeckt. Bei den in der Provinz Henan gesammelten Mücken wurde eine hohe Resistenz gegen Pyrethroide und Propoxur festgestellt, die Resistenz gegen Malathion variierte jedoch je nach Probenahmeort. In dieser Studie wurde erstmals die Mutation L1014W (TGG) nachgewiesen. Im ace-1-Gen wurde nur eine Mutation, G119S, gefunden. Mutationen in den Genen kdr und ace-1 spielen eine Rolle bei der Entstehung von Insektizidresistenz in An. sinensis. Die genetische Vielfalt deltamethrinresistenter und deltamethrinempfindlicher Mücken zeigte keine genetische Differenzierung. Die Entstehung von Resistenzen könnte das Ergebnis der Kombination mehrerer Faktoren sein. Weitere Experimente sind erforderlich, um umfassende Forschungsdaten zu Resistenzmechanismen aus enzymologischer und proteomischer Sicht zu sammeln. Diese Ergebnisse sind ein Schritt zur Bereitstellung fehlender Daten zur Insektizidresistenz von An. sinensis in der Provinz Henan und liefern die wissenschaftliche Grundlage für die Steuerung der Bekämpfung von An. sinensis.

Die in der aktuellen Studie verwendeten Datensätze sind auf begründete Anfrage beim jeweiligen Autor erhältlich.

Acetylcholinesterase-1

Zentrum für Krankheitskontrolle und Prävention

Cytochromoxidase-Untereinheit I

Bestätigter Widerstand

Gamma-Aminobuttersäure

Knockdown-Widerstand

Mitochondrien-DNA

Möglicher Widerstand

Anfällig

Natriumionenkanäle

WER. Welt-Malaria-Bericht 2022. 2022. https://www.who.int/teams/global-malaria-programme/reports/world-malaria-report-2022. Zugriff am 7. Februar 2023.

Zhang HW, Su YP, Xu BL. Ein Überblick über die Malariabekämpfung und -forschung in der chinesischen Provinz Henan. J Pathog Biol. 2006;1:64–6.

CAS Google Scholar

Zhang HW, Su YP, Zhou GC, Liu Y, Xu BL. Epidemiologische Untersuchung von Malaria in der Stadt Shangqiu, Provinz Henan in den Jahren 2000–2005. Chin Trop Dis. 2006;7:1157–8.

Google Scholar

Chu WD, Zhang YJ. Importierte Malaria-Epidemie-Situation und ihre Überwachung in China. J Trop Med. 2018;18:127–30.

Google Scholar

Chen HY, Li KL, Wang XH, Yang XY, Lin Y, Cai F, et al. Erste Identifizierung des kdr-Allels F1534S im VGSC-Gen und dessen Zusammenhang mit der Resistenz gegen Pyrethroid-Insektizide in Populationen von Aedes albopictus aus der Stadt Haikou, Insel Hainan, China. Infizieren Sie diese Armut. 2016;5:31–8.

Artikel PubMed PubMed Central Google Scholar

Nationale Gesundheitskommission der Volksrepublik China. China hat die Zertifizierung der Weltgesundheitsorganisation zur Eliminierung von Malaria erfolgreich bestanden. 2021. http://www.nhc.gov.cn/jkj/s5874/202106/cffeb8ba568c4939a7e72668dd446d4c.shtml. Zugriff am 8. Februar 2023.

Feng J, Zhang L, Tu H, Zhou SS, Xia ZG. Von der Eliminierung bis zur Post-Eliminierung: epidemische Merkmale, Herausforderungen und Strategien zur Verhinderung der erneuten Übertragung importierter Malaria in China. Chin Trop Dis. 2021;21:5–10.

Google Scholar

Yang CY, Qian D, Lu DL, Liu Y, Zhou RM, Li SH, et al. Epidemischer Status von Malaria und Fortschritte bei der Eliminierung der Malaria in der Provinz Henan, 2018. Chin J Schisto Control. 2020;32:298–300.

CAS Google Scholar

Jiang L, Zhou YM, Gao YF. Großer Fortschritt in der Mückenresistenzforschung. Hafengesundheitskontrolle. 2019;24:59–62.

Google Scholar

WER. Präqualifizierte Produkte zur Vektorbekämpfung. 2023. https://extranet.who.int/pqweb/vector-control-products/prequalified-product-list. Zugriff am 31. März 2023.

Zhang HW, Liu Y, Hu T, Zhou RM, Chen JS, Qian D, et al. Niederschlagsresistenz von Anopheles sinensis in der Provinz Henan, China. Malar J. 2015;14:137.

Artikel CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Lin KM, Yang YC, Li J. Fortschritte der Insektizidresistenz der wichtigsten Malariaüberträger in China. Chin Trop Dis. 2019;19:584–90.

Google Scholar

Chang XL, Zhong DB, Eugenia L, Fang Q, Bonizzoni M, Wang XM, et al. Landschaftsgenetische Struktur und evolutionäre Genetik von Insektizidresistenz-Genmutationen bei Anopheles sinensis. Parasitenvektoren. 2016;9:228.

Artikel PubMed PubMed Central Google Scholar

Tan WL, Li CX, Lv RC, Dong YD, Guo XX, Xing D, et al. Der Polymorphismus und die geografische Verteilung der Knockdown-Resistenz erwachsener Anopheles sinensis-Populationen in Ostchina. Malar J. 2019;18:164.

Artikel PubMed PubMed Central Google Scholar

Essandoh J, Yawson A, Weetman D. Die Zielstellenmutation 119S der Acetylcholinesterase (Ace-1) ist ein starker diagnostischer Hinweis auf die Carbamat- und Organophosphatresistenz bei Anopheles gambiae ss und Anopheles coluzzii im Süden Ghanas. Malar J. 2013;12:404.

Artikel PubMed PubMed Central Google Scholar

Yang FL. Taxonomie der Anopheles hyrcanus-Gruppe aus Südchina und Populationsstruktur von Anopheles sinensis in Yunnan (Diptera: Culicidae: Anopheles). Chongquing: Normale Universität Chongqing; 2014. S. 1–64.

Wang XT, Zhang YJ, He X, Mei T, Chen B. Identifizierung, Eigenschaften und Verteilung von Mikrosatelliten im gesamten Genom von Anopheles sinensis (Diptera: Culicidae). Acta Entomol Sin. 2016;59:1058–68.

Google Scholar

Li J, Zhang XF, Xu LL, Shen YY, Li XX, Wang ZY. Genetische Struktur und Wolbachia-Infektion in geografischen Populationen von Monolepta hieroglyphica (Coleoptera: Chrysomelidae) in Südchina. Acta Entomol Sin. 2021;64:730–42.

Google Scholar

Guo XX, Cheng P, Liu LJ, Zhang CX, Wang HF, Wang HW, et al. Analyse der genetischen Populationsvielfalt von Mücken aus der Provinz Shandong basierend auf dem Igenfragment der mitochondrialen DNA der Cytochromoxidase-Untereinheit. Chin J Schisto-Kontrolle. 2018;30:37–41.

Google Scholar

Hu YB, He ZQ, Liu Y, Qian D, Yang CY, Lu DL, et al. Anfälligkeit von Anopheles sinensis gegenüber Insektiziden in der Stadt Puyang, Provinz Henan. Chin J Schisto-Kontrolle. 2021;33:501–4+9.

CAS Google Scholar

Liu Y, Chen JS, Zhou RM, Qian D, Chen QW, Xu BL, et al. Untersuchung zur Empfindlichkeit von Anopheles sinensis gegenüber Insektiziden. Chin J Parasitol Parasit Dis. 2012;30:309–11.

CAS Google Scholar

Zhang YQ, Zhao Q, Liu JQ, Guo XS, Tang ZQ, Zhao XD. Resistenz von Anopheles sinensis gegen drei Arten von Insektiziden in der Stadt Xinyang. Chin J Hyg Insektenausrüstung. 2014;20:368–70.

CAS Google Scholar

Wu GL. Menschliche Parasitologie. 4. Aufl. Peking: People's Health Publishing House; 2013.

Google Scholar

WER. Testverfahren zur Überwachung der Insektizidresistenz bei Malaria-Überträgermücken. Zweite Ausgabe. 2018. https://who.int/iris/bitstream/handle/10665/250677/9789241511575-eng.pdf. Zugriff am 31. März 2023.

Yajun M, J Med Entomol. 2005;42:610–9.

PubMed Google Scholar

Chang XL, Zhong DB, Fang Q, Hartsel J, Zhou GF, Shi LN, et al. Mehrere Resistenzen und komplexe Mechanismen der Anopheles sinensis-Mücke: ein großes Hindernis für die Kontrolle und Beseitigung von durch Mücken übertragenen Krankheiten in China. PLoS Negl Trop Dis. 2014;8:e2889.

Artikel PubMed PubMed Central Google Scholar

Liang QG. Nachweis von Mutationen in kdr- und ace-1-Genen von Resistenzzielen und Populationsgenetik von Anopheles sinensis in der Provinz Guizhou, China. Guizhou: Medizinische Universität Guizhou; 2019. S. 1–50.

Abbott WS. Eine Methode zur Berechnung der Wirksamkeit eines Insektizids. J Econ Entomol. 1925;18:265–7.

Artikel CAS Google Scholar

He ZQ, Zhang QQ, Wang D, Hu YB, Zhou RM, Qian D, et al. Genetischer Polymorphismus des Circumsporozoit-Proteins von Plasmodium falciparum bei chinesischen Wanderarbeitern, die aus Afrika in die Provinz Henan zurückkehren. Malar J. 2022;21:248.

Artikel CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Zhong DB, Aung PL, Mya MM, Wang XM, Qin Q, Soe MT, et al. Gemeinschaftsstruktur und Insektizidresistenz von Malariaüberträgern im nördlichen Zentral-Myanmar. Parasitenvektoren. 2022;15:155.

Artikel CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Cui SL, Li F, Chen GY, Zhang HP, Wang TZ. Empfindlichkeit von Anopheles sinensis gegenüber Insektiziden. Chin J Hyg Insektenausrüstung. 2013;19:223–4.

CAS Google Scholar

Bo YX, Tang ZQ, Zhang YQ, Li SJ. Insektizidresistenz von Culex pipiens pallens in der Provinz Henan. Chin J Hyg Insektenausrüstung. 2010;16:214–6.

CAS Google Scholar

Qian WP, Liu N, Yang Y, Liu J, He JH, Chen ZH, et al. Eine Untersuchung von Insektizidresistenz verleihenden Mutationen in mehreren Zielen in Anopheles sinensis-Populationen in Sichuan, China. Parasitenvektoren. 2021;14:169.

Artikel CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Weill M, Lutfalla G, Mogensen K, Chandre F, Berthomieu A, Berticat C, et al. Insektizidresistenz bei Mückenüberträgern. Natur. 2003;423:136-7. https://doi.org/10.1038/423136b.

Qin Q, Li YJ, Zhang DB, Zhou N, Chang XL, Li CY, et al. Insektizidresistenz von Anopheles sinensis und An. vagus auf der Insel Hainan, einem Malaria-Endemiegebiet in China. Parasitenvektoren. 2014;7:92.

Artikel PubMed PubMed Central Google Scholar

Chen SX, Qin Q, Zhong DB, Fang X, He HJ, Wang LJ, et al. Insektizidresistenzstatus und -mechanismen von Anopheles sinensis (Diptera: Culicidae) in Wenzhou, einer wichtigen Küstenhafenstadt in China. J Med Entomol. 2019;56:803–10.

Artikel CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Vaughan A, Rocheleau T, Ffrench-Constant R. Ortsgerichtete Mutagenese eines Acetylcholinesterase-Gens aus der Gelbfiebermücke Aedes aegypti verleiht Insektizidunempfindlichkeit. Exp Parasitol. 1997;87:237–44.

Artikel CAS PubMed Google Scholar

Milani R. Mendelsches Widerstandsverhalten gegen die Stichwirkung von DDT: Korrelation zwischen Keulung und Mortalität bei Musca Domestica L. Riv Parasitol. 1954;15:513–42.

Google Scholar

Martinez-Torres D, Chandre F, Williamson MS, Darriet F, Berge JB, et al. Molekulare Charakterisierung der Pyrethoid-Knockdown-Resistenz (kdr) beim Hauptmalariavektor Anopheles gambiae ss. Insekten Mol Biol. 1998;7:179–84.

Artikel CAS PubMed Google Scholar

Martinez-Torres D, Foster SP, Field LM, Devonshire AL, Williamson MS. Eine Natriumkanal-Punktmutation ist mit einer Resistenz gegen DDT und Pyrethroid-Insektizide bei der Pfirsich-Kartoffel-Blattlaus Myzus persicae (Sulzer) (Hemiptera: Aphididae) verbunden. Insekten Mol Biol. 1999;8:339–46.

Artikel CAS PubMed Google Scholar

Tan WL, Wang ZM, Li CX, Chu HL, Xu Y, Dong YD, et al. Erster Bericht über das gleichzeitige Auftreten von Knockdown-Resistenzmutationen und der Anfälligkeit gegenüber Beta-Cypermethrin bei Anopheles sinensis aus der Provinz Jiangsu, China. Plus eins. 2012;7:e29242.

Artikel CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Kang S, Jung J, Lee S, Hwang H, Kim W. Der Polymorphismus und die geografische Verteilung der Knockdown-Resistenz (kdr) von Anopheles sinensis in der Republik Korea. Malar J. 2012;11:151.

Artikel PubMed PubMed Central Google Scholar

So YW. Studie zum Deltamethrin-Resistenzmechanismus von Anopheles sinensis in Zentral- und Südchina. Peking: Chinesisches Zentrum für Krankheitskontrolle und Prävention; 2016. S. 1–78.

Tan WL, Li CX, Wang ZM, Liu MD, Dong YD, Feng XY, et al. Erster Nachweis von multiplen Knockdown-Resistenz (kdr)-ähnlichen Mutationen im spannungsgesteuerten Natriumkanal mithilfe von drei neuen Genotypisierungsmethoden in Anopheles sinensis aus der Provinz Guangxi, China. J Med Entomol. 2012;49:1012–20.

Artikel CAS PubMed Google Scholar

Yang FL, Li XD, Yan ZT, Fu WB, Chen B. Genetische Variation und Populationsstruktur von Anopheles sinensis (Diptera: Culicidae) in Yunnan. Acta Entomol Sin. 2015;35:5449–57.

Google Scholar

Referenzen herunterladen

Wir möchten allen Teilnehmern dafür danken, dass sie sich freiwillig die Zeit genommen haben, an dieser Studie teilzunehmen.

Diese Arbeit wurde vom Henan Medical Science and Technology Research Program (LHGJ20210145, LHGJ20220178) unterstützt.

Zhi-quan He und Ya-bo Hu trugen gleichermaßen zu dieser Arbeit bei.

Abteilung für die Kontrolle und Prävention von Parasitenkrankheiten, Henan-Zentrum für die Kontrolle und Prävention von Krankheiten, Zhengzhou, China

Zhi-quan He, Dan Wang, Cheng-yun Yang, Dan Qian, Rui-min Zhou, De-ling Lu, Su-hua Li, Ying Liu und Hong-wei Zhang

Henan Provincial Medical Key Laboratory of Parasitic Pathogen and Vector, No. 105 South Agricultural Road, Zhengdong New District, Zhengzhou, 450016, China

Zhi-quan He, Dan Wang, Cheng-yun Yang, Dan Qian, Rui-min Zhou, De-ling Lu, Su-hua Li, Ying Liu und Hong-wei Zhang

Zhengzhou Second Hospital, No. 90 Hangzhou Middle Road, Erqi District, Zhengzhou, 450016, China

Ya-bo Hu

College of Public Health, Zhengzhou University, No.100 Science Avenue, High-Tech District, Zhengzhou, 450016, China

Yu-ting Liu

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ZQH, YBH, YL und HWZ haben die Studie konzipiert. DW und YTL analysierten die Daten. YL, SHL, DQ und CYY nahmen an der Studie teil. ZQH hat das Manuskript verfasst. DLL, RMZ und HWZ überarbeiteten das Manuskript. Alle Autoren haben das endgültige Manuskript gelesen und genehmigt.

Korrespondenz mit Ying Liu oder Hong-wei Zhang.

Für die beschriebenen Feldstudien waren keine besonderen Genehmigungen erforderlich. Für die Mückensammlung wurde an jedem Standort die mündliche Zustimmung der Feld- und Hausbesitzer eingeholt. Bei diesen Standorten handelte es sich nicht um geschützte Gebiete, und die Feldstudien umfassten keine gefährdeten oder geschützten Arten.

Unzutreffend.

Die Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden Interessen haben.

Springer Nature bleibt neutral hinsichtlich der Zuständigkeitsansprüche in veröffentlichten Karten und institutionellen Zugehörigkeiten.

. Verteilung und Häufigkeit von 10 Genotypen bei 1014 im kdr-Gen in Anopheles sinensis.

Genetische Distanz und genetischer Differenzierungsindex der beiden Populationen.

Open Access Dieser Artikel ist unter einer Creative Commons Attribution 4.0 International License lizenziert, die die Nutzung, Weitergabe, Anpassung, Verbreitung und Reproduktion in jedem Medium oder Format erlaubt, sofern Sie den/die Originalautor(en) und die Quelle angemessen angeben. Geben Sie einen Link zur Creative Commons-Lizenz an und geben Sie an, ob Änderungen vorgenommen wurden. Die Bilder oder anderes Material Dritter in diesem Artikel sind in der Creative Commons-Lizenz des Artikels enthalten, sofern in der Quellenangabe für das Material nichts anderes angegeben ist. Wenn Material nicht in der Creative-Commons-Lizenz des Artikels enthalten ist und Ihre beabsichtigte Nutzung nicht gesetzlich zulässig ist oder über die zulässige Nutzung hinausgeht, müssen Sie die Genehmigung direkt vom Urheberrechtsinhaber einholen. Um eine Kopie dieser Lizenz anzuzeigen, besuchen Sie http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/. Der Creative Commons Public Domain Dedication-Verzicht (http://creativecommons.org/publicdomain/zero/1.0/) gilt für die in diesem Artikel zur Verfügung gestellten Daten, sofern in einer Quellenangabe für die Daten nichts anderes angegeben ist.

Nachdrucke und Genehmigungen

He, Zq., Hu, Yb., Wang, D. et al. Insektizidresistenz von Anopheles sinensis nach Eliminierung der Malaria in der Provinz Henan, China. Parasiten Vektoren 16, 180 (2023). https://doi.org/10.1186/s13071-023-05796-z

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Eingegangen: 14. Februar 2023

Angenommen: 02. Mai 2023

Veröffentlicht: 02. Juni 2023

DOI: https://doi.org/10.1186/s13071-023-05796-z

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